Корекція вродженого імунітету інтактних та щеплених проти ньюкаслської хвороби курчат з використанням пробіотичного нанометалоглобулінового препарату
DOI: http://dx.doi.org/10.31548/dopovidi2018.03.031
Анотація
Розробка ефективних комплексних препаратів для підвищення життєздатності молодняка сільськогосподарських тварин шляхом стимуляції активності імунітету, вивчення біологічного впливу цих препаратів на експресію генів цитокінів та формування гуморального імунітету за його маркерами, є актуальною проблемою.
Метою досліджень було встановити вплив комплексного пробіотичнометалоглобулінового препарату (ПНМГП) на динаміку факторів вродженого імунітету у інтактних курчат та при їх щепленні живою вакциною проти ньюкаслської хвороби.
Дослідження проведені у ННЦ «Інститут експериментальної і клінічної ветеринарної медицини». Було сформовано 3 групи (n=15) клінічно здорових курчат. Птиця 1-ї та 2-ї дослідних груп отримувала ПНМГП, починаючи з 5-ї доби життя протягом 5 діб у дозі 5 г/голову, змішаний з комбікормом. Третя група птиці була контрольною. На 17 добу досліду проведено щеплення птиці 2-ї дослідної та 3-ї груп комерційною живою вакциною проти хвороби Ньюкасла із штаму Ла-Сота. На 27, 37 та 47 добу досліду по 5 голів з кожної групи були еутаназовані та відібрана кров для клініко-біохімічних та молекулярно-генетичних досліджень.
Встановлено, що згодовування ПНМГП викликає підвищення кількості лейкоцитів у крові на 11,3%– 23,9% та рівня гемоглобіну на 9,6%– 49,0% щодо відповідних показників курчат контрольної групи. Застосування препарату обумовлює підвищення рівня забезпеченості організму дослідної птиці залізом. Зокрема, коефіцієнт насиченості трансферину залізом впродовж періоду дослідження у птиці 1 групи був підвищеним на 28,7%–34,3%, аналогічний вплив встановлено у курчат 2 групи.
Під дією ПНМГП відбуваються різноспрямовані зміни рівня маркерів неспецифічного гуморального імунітету: у сироватці крові дослідної птиці підвищується рівень загального білку за рахунок фракції глобулінів і вміст циркулюючих імунних комплексів, послаблюється супресивний вплив живої вакцини проти ньюкаслської хвороби на гуморальну ланку імунітету – рівень Sm у птиці 2-ї групи порівняно з показниками курчат 3-ї групи був нижчим на 10,0%, 8,6% та 25,0% на 10, 20 та 30 добу після щеплення відповідно. У курчат 1 групи рівень експресії гена IL-2 перевищував контрольні значення на 91,1%, та 88,8% на 27 та 47 добу досліду відповідно, а на 37 добу – у 10,7 раза, а IL-17 – на 50,0% та 59,2% на 27 та 47 добу відповідно, на 37 добу – у 3,5 раза. Інтенсивність експресії генів IL-2 та IL-17 у курчат 2 групи був максимально підвищеним у 20,7 раза та у 2,4 раза відповідно. Отримані нами дані свідчать про виражений імуномдулюючий вплив ПНМГП на стан вродженого імунітету птиці. Це сприяє посиленню синтезу специфічних поствакцинальних антитіл до вірусу ньюкасльської хвороби: їх рівень у птиці 2-ї групи перевищував показники групи контролю на 14,3% – 25,7% впродовж терміну досліджень.
Отримані нами дані за встановленими тенденціями розвитку імунних реакцій при застосуванні комплексного про біотичного нанометалоглобулінового препарату співпадають з результатами інших дослідників і можуть бути використані як підґрунтя для розробки та застосування засобів для підвищення вродженого імунітету тварин та імуногенності вакцинних препаратів.
Ключові слова: комплексний пробітичний нанометлоглобуліновий препарат, вроджений імунітет, птиця, експресія генів цитокінів, вакцинація, специфічний імунітет
Повний текст:
PDFПосилання
Ostrovskiy, A.V., Kudryavtseva E.N, Gusakov V. K. (1999). Estestvennaya rezistentnost’ kur-nesushek [Natural resistance of chicken bearers]. Scientific records of Education institutions "Vitebsk Academy of Veterinary Medicine", 35 (1), 210-211.
Krasochko, P. A., Yakubovskiy, M. P., Krasochko, I. A., Lysenko, A. P., Eremets, V. I., Prudnikov, V. S., Yatusevich, A. I., Kovalev, N. A., Boroznov, S. L., Mashero, V. A., Golushko, V. M., Mishayeva, N. P., Kuchinskiy, M. P., Malashko, V. V., Veremey, E. I., Krasochko, P. P., Malashko, D. V., Stepanova, E. A., Eremets, N. G., Eremets, N. K. (2008). Immunokorrektsiya v klinicheskoy veterinarnoy meditsine [Immunocorrection in clinical veterinary medicine]. Minsk: Tekhnoperspektiva, 507.
Cavazzoni, V., Adami, A. Castrovilli, C. (1998). Performance of broiler chickens supplemented with Bacillus coagulans as probiotic. Br Poult Sci, 39 (4), 526-5299. https://doi.org/10.1080/00071669888719
Grant, A., Gay, C. G., Lillehoj, H. S.(2018). Bacillus spp. as direct-fed microbial antibiotic alternatives to enhance growth, immunity, and gut health in poultry. Аvian Pathol, 2, 1-13. https://doi.org/10.1080/03079457.2018.1464117
Cui, L. H, Yan, C. G., Li, S. H., Kim, W. S., Hong, L., Kang, S. K, Choi,Y. J., Cho, C. S. ( 2014). A New Method of Producing a Natural Antibacterial Peptide by Encapsulated Probiotics Internalized with Inulin Nanoparticles as Prebiotics. J Microbiol Biotechnol, 28 (4), 510-519. doi: 10.4014/jmb.1712.12008
Khabar, K. S. (20140 Post-transcriptional control of cytokine gene expression in health and disease. J Interferon Cytokine Res., 34 (4), 215-2199. https://doi.org/10.1089/jir.2013.0151
Bhardwaj, R., Verma, R., Deka, D., Dubey, P. P.,, Arora, J.S., Sethi, R. S., Tolenkhomba, T. C., Mukhopadhyay, C. S. (2018) Validation of immunomodulatory effects of lipopolysaccharide through expression profiling of Th1 and Th2 biased genes in Newcastle disease virus vaccinated indigenous chicken. Vet World, 11 (4). 437-445. doi: 10.14202/vetworld.2018.437-445r
Park, H. E., Park, H. T., Jung, Y. H., Yoo, H, S. (2018). Gene expression profiles of immune-regulatory genes in whole blood of cattle with a subclinical infection of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. PLoS One, 26; 13, (4), e0196502. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0196502
Cui, L. H.,, Yan, C. G., Li, H. S., Kim, W.S., Hong, L., Kang, S .K., Choi, Y. J., Cho C. S. (2018). A New Method of Producing a Natural Antibacterial Peptide by Encapsulated Probiotics Internalized with Inulin Nanoparticles as Prebiotics.J Microbiol Biotechnol., 28 (4), 510-519. doi: 10.4014/jmb.1712.12008
Lee, S. H., Jang, S. I., Kim, D.K.., Ionescue, K., Bravo, D., Lillehoj, H.S. (2010). Synergistic effect of dietary Curcuma, Capsicum, and Lentinus on Enhancing Local Immunity Against Eimeria acervulina Infection. Journal Poultry Science 47:89-95.
Yausheva, Е., Miroshnikov S.,Sizova, Е. (2018). Intestinal microbiome of broiler chickens after use of nanoparticles and metal salts. Environ Sci Pollut Res Int. [Еpub ahead of print]. doi: 10.1007/s11356-018-1991-5.
Shokryazdan, P., Faseleh, J. M., Liang, J.B., Ramasamy, K., Sieo, C.C., Ho, Y. W. (2017). Effects of a Lactobacillus salivarius mixture on performance, intestinal health and serum lipids of broiler chickens., PLoS One., 12 (5):e0175959. doi: 10.1371/journal.pone.0175959.
Susta, L., Diel, D. G.,,4, Courtney, S., Cardenas-Garcia, S., Sundick, R. S., Miller, P. J., Brown, C. C., Afons, C. L. (2015). Expression of chicken interleukin-2 by a highly virulent strain of Newcastle disease virus leads to decreased systemic viral load but does not significantly affect mortality in chickens. Virol J., 12, 122. doi: 10.1186/s12985-015-0353-x.
Kovalenko, L. V., Boiko, V. S., Rudenko, O. P., Krotovska, Yu. M. (2017) Vplyv kompleksnoho probiotychno nanometalohlobulinovoho preparatu na riven pokaznykiv nespetsyfichnoi rezystentnosti kurchat [Influence of the complex probiotic nanometalloglobulin preparation on the level of indices of nonspecific resistance of chickens].Veterinary medicine, 103, 335-339.
Stehnii B. T. Kovalenko L. V, Mykhailova, S. A.., Rudenko, O. P., Boiko, V. S., Matiusha, L. V., Krotovska, Yu. M. (2013). Metody doslidzhen markeriv funktsionalnoho stanu klityn peryferychnoi krovi ta kistkovoho mozku tvaryn [Methods of research of markers of the functional state of cells of peripheral blood and bone marrow of animals.]. Kharkiv, 59.
Chomczynski, P., Sacchi N. (1987). Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal Biochem., 162 (1), 156-159. doi: 10.1006/abio.1987.9999
Hong, Y. H., Lillehoj, H. S., Lee, S. H., Dalloul, R. A., Lillehoj, E. P. (2006). Analysis of chicken cytokine and chemokine gene expression following Eimeria acervulina and Eimeria tenella infections. Vet Immunol Immunopathol., 114 (3-4), 209-223. doi: 0.1016/j.vetimm.2006.07.007
Kim, W. H., Jeong, J., Park, A. R.,Yim, D., Kim, Y. H., Kim, K.D., Chang, H.H.,Lillehoj, H.S, Lee B.H.,Min, W. (2012). Chicken IL-17F: identification and comparative expression analysis in Eimeria-infected chickens. Dev Comp Immunol., 38 (3), 401-409. doi: 10.1016/j.dci.2012.08.002.
Метрики статей
Metrics powered by PLOS ALM
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.