Отримання гаплоїдів та дигаплоїдів буряків цукрових (Beta vulgaris L.) в умовах in vitro

Автор(и)

  • О. Kliachenko , Національний університет біоресурсів і природокористування України, Київ, Україна
  • L. Prysiazhnuk Ukrainian Institute for Plant Variety Examination, Kyiv, Ukraine , Український інститут експертизи сортів рослин, Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.31548/biologiya13(3-4).2022.004

Ключові слова:

цукрові буряки, гаплоїди, дигаплоїди, калюс, рослини-регенеранти.

Анотація

Значну роль в селекційному процесі відіграють біотехнологічні методи, оскільки уможливлюють з високою ефективністю створювати вихідний матеріал. Пріоритетним напрямом у сучасній інноваційній біотехнології рослин є метод експериментальної гаплоїдії. Підібрано та застосовано ступінчасту передобробку ізольованих бутонів зниженими (+4°С протягом 36 год) і підвищеними температурами (+22°С протягом 21 доби та +30°С – 10, 14, 21 діб), яка дає можливість завершення процесу диференціації. Показано, що для індукції ембріогенного розвитку незалежно від генотипу оптимальною виявилася температура +30°С за тривалості культивування упродовж 21 доби. При цьому регенераційна здатність отриманих ембріоїдів обумовлювалась вихідним генотипом. Одержані укорінені гаплоїдні рослини-регенеранти з нормальною гео- і фототропічною реакцією переводили на диплоїдний рівень (2n=38) за допомогою дії водного розчину 0,1 % колхіцину на кореневу систему за експозиції 4 год. Встановлено, що створення гомозиготних ліній залежить від генотипних особливостей донорного матеріалу, який визначає кількість отриманих гаплоїдних рослин-регенерантів з різними характерними ознаками. При цьому велике значення має послідовність живильних середовищ для проведення стабілізації гаплоїдних форм. Залежно від морфологічного розвитку регенерантів чередування безгормонального і доповненого фітогормонами живильних середовищ сприяє виживанню рослин в межах 90-95%. Вивчено вплив експантатів на регенераційну здатність гаплоїдних рослин. Показано, що оптимальним для індукування процесів прямого та непрямого морфогенезу in vitro є жилки та черешки цукрових буряків. Розроблена нами методика для отримання гаплоїдних рослин безпосередньо із ЧС ліній буряків цукрових дає можливість в короткий термін отримати гомозиготний матеріал, який може бути використано в гетерозисній селекції, оскільки традиційними методами гомозиготність досягається шляхом глибокого інбридингу і появою інбредної депресії.

Біографія автора

  • автор О. Kliachenko, афіліація , Національний університет біоресурсів і природокористування України, Київ, Україна

    National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine

Посилання

Kovalchuk, N., Roik, M., Hadzalo, Y., Nediak, T., & Zinchenko, O. (2019). Improvement of the technology of obtaining stable (di) haploid regenerants from embryonic culture of apomictic sugar beet (Beta vulgaris) breeding material without the use of colchicine. Agricultural Science and Practice, 6 (2), 3-17. https://doi.org/10.15407/agrisp6.02.003

Бочкарева, Э.Б., Горлова, Л.А., Сердюк, В.В., Стрельников, Е.А. (2019). Селекционная ценность дигаплоидных линий рапса ярового (Brassica napus L.). Масличные культуры, 4 (180), 18-22. https://doi.org/10.25230/2412–608Х–2019–4–180–18–22

Tomaszewska-Sowa, M., & Keutgen, A. J. (2022). Plant regeneration from unpollinated ovules of sugar beet (Beta vulgaris L.) on growing media with different carbohydrates. Sugar Tech, 24(2), 542-550. https://doi.org/10.1007/s12355-021-00975-7

Nohzadeh Malakshah, S., Habibi Rezaei, M., Heidari, M., & Hosseini Salekdeh, G. (2007). Proteomics reveals new salt responsive proteins associated with rice plasma membrane. Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 71(9), 2144-2154. https://doi.org/10.1271/bbb.70027

Белинская, Е. В. (2007). Создание признаковой коллекции ячменя по способности к андрогенезу in vitro и ее использование в генетических и биотехнологических исследованиях. Вісн. Укр. т-ва генетиків і селекціонерів. 5 (1, 2), 11-20.

Балков, ?. Я. (1990). ЦМС сахарной свеклы. М.: Агропромиздат, 239.

Klyachenko, O. L. (2011). Features microclonal reproduction of O-types of sugar beet (Beta vulgaris L.). In Sugar Beet Crops: Growth, Fertilization & Yield (pp. 173-179).

Батыгина, Т.Б., Васильева, В.Е. (2002). Размножение растений. С.-Пб.: ?зд-ство Санкт-Петербургского ун-та, 232.

Tomaszewska-Sowa, M., & Olszewska, D. (2019). Evaluation of genetic stability of sugar beet (Beta vulgaris L.) plants obtained from unfertilized ovules using RAPD markers. Journal of Central European Agriculture, 20(3), 928-937. https://doi.org/10.5513/JCEA01/20.3.2175

DellaPenna, D., & Pogson, B. J. (2006). Vitamin synthesis in plants: tocopherols and carotenoids. Annual review of plant biology, 57 (1), 711-738. https://doi.org/10.1146/

Сатарова, Т. Н., Черчель, В. Ю., Черенков, А. В. (2013). Кукуруза: биотехнологические и селекционные аспекты. Днепропетровск: Новая идеология, 552

Подвигина, О. А. (2010). ?ндуцирование гаплоидии из неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы в условиях in vitro. In Энциклопедия рода Beta. Биология, генетика и селекция свеклы (p. 455).

Seguí-Simarro, J. M., & Nuez, F. (2007). Embryogenesis induction, callogenesis, and plant regeneration by in vitro culture of tomato isolated microspores and whole anthers. Journal of Experimental Botany, 58(5), 1119-1132. https://doi.org/10.1093/jxb/erl271

Pazuki, A., Aflaki, F., Gürel, S., Ergül, A., & Gürel, E. (2018). The effects of proline on in vitro proliferation and propagationof doubled haploid sugar beet (Beta vulgaris). Turkish Journal of Botany, 42(3), 280-288. https://doi.org/10.3906/bot-1709-14

Кляченко, О. Л., & Мельничук, М. Д. (2014). Біотехнологія а агросфері: Навчальний посібник. Вінниця, 265

Klyachenko, O. L. (2002). Morfogenesis in vitro unfertilized ovules of sugar beet (Beta vulgaris L.). Bulletin of the State Nikitsky Botanical Gardens, 86, 30-32.

Skoog, F., Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant, 15, 473-497.

Драгунова, O. K. (2005). Індукція галоїдного партеногенезу в умовах культури in vitro у цукрових буряках. Збірник наукових праць [Інституту цукрових буряків УААН], (8), 411-418.

Жужжалова, Т. П., Подвигина, О. А., & Знаменская, В. В. (2010). Пути воспроизведения нового организма сахарной свеклы в культуре in vitro. В сб.: Энциклопедия рода Вeta. Биология, генетика и селекция свеклы (науч. тр. ?нститута цитологии и генетики СО РАН). Новосибирск, 403-419.

Grigolava, T. R., Vishnyakova, A. V., Sinitsyna, A. A., Voronina, A. V., Zubko, O. N., Zudova, O. V., & Monakhos, S. G. (2021). Methodological approaches for producing doubled haploids in sugar beet and red beet (Beta vulgaris L.). Vavilov Journal of Genetics and Breeding, 25(3), 276. https://doi.org/10.18699/VJ21.031

Finch-Savage, B. (2013). Seeds: Physiology of development, germination and dormancy (3rd edition) -JD Bewley, KJ Bradford, HWM Hilhorst H. Nonogaki. 392 pp. Springer, New York-Heidelberg-Dordrecht-London2013978-1-4614-4692-7. Seed Science Research, 23(4), 289-289. https://doi.org/10.1017/S0960258513000287

Pazuki, A., Aflaki, F., Gürel, E., Ergül, A., & Gürel, S. (2018). Gynogenesis induction in sugar beet (Beta vulgaris) improved by 6-benzylaminopurine (BAP) and synergized with cold pretreatment. Sugar Tech, 20(1), 69-77. https://doi.org/10.1007/s12355-017-0522-x

Завантаження

Опубліковано

2023-08-15

Номер

Розділ

Статті