Рентгенологічні зміни колінного суглобу кроля за експериментального остеоартрозу

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.31548/dopovidi6(106).2023.016

Ключові слова:

остеоартрит, колінний суглоб, експериментальна модель, суглобовий хрящ, візуальна діагностика, рентгенографія

Анотація

У ветеринарній медицині найпоширенішим та найдоступнішим методом діагностики хвороб апарату руху в тварин вважаються рентгенологічні дослідження [1].

                  У зв’язку з цим дослідження викладені в цій статті були спрямовані на оцінку ступеня дегенеративних змін під час моделювання остеоартрозу колінного суглоба за допомогою рентгенографії.

Матеріалом дослідження були суглоби експериментальних тварин (кролів) із сформованим остеоартрозом колінного суглобу на  14, 21 та 28 доби експерименту.

         Кролям моделювали дегенеративні зміни в колінному суглобі шляхом внутрішньосуглобового уведення 4% розчину ретинолу ацетату і коєвої кислоти. На 7, 14, 21 і 28 доби експерименту проводили рентгенологічне дослідження.

Рентгенологічні дослідження проводили в двох проекціях, а саме у прямій (вентро-дорсальній) та боковій (медіо-латеральній) проекціях. Дослідження проводили на базі навчальної лабораторії «Ветеринарної ренгенології та ренгенодіагностики» кафедри терапії і клінічної діагностики ФВМ Національного університету біоресурсів і природокористування України з використанням рентгенологічного приладу ВАТЕЛ – 1 

У тварин на 14 добу  експериментальних досліджень за проведення рентгенографії видимої кісткової патології не відмічено, висота суглобової щілини збережена білатерально. На 21 добу в ділянці правого колінного суглобу (в якому формували патологічний процес) при проведенні рентгенографії відмічається помірне зниження висоти суглобової щілини з перевагою в медіальному відділі. На 28 добу експерименту в ділянці правого колінного суглобу під час проведення рентгенографії відмічається рівномірне зниження висоти суглобової щілини. Дані зміни вказують на прогресуючі дегенеративні зміни з втратою хряща в колінному суглобі дослідних тварин.

         Отже, на рентгенологічних знімках у кролів за експериментального остеоартрозу на 21 і 28 доби експерименту відзначали зниження висоти суглобової щілини у колінному суглобі.

Посилання

Allan, G., & Davies, S. (2018b). Radiographic Signs of Joint Disease in Dogs and Cats. У Textbook of Veterinary Diagnostic Radiology (с. 403–433). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-323-48247-9.00033-4

Muehleman, C., Chapman, L. D., Kuettner, K. E., Rieff, J., Mollenhauer, J. A., Massuda, K., & Zhong, Z. (2003a). Radiography of rabbit articular cartilage with diffraction-enhanced imaging. The Anatomical Record, 272A(1), 392–397. https://doi.org/10.1002/ar.a.10043

Li, C., He, Y., Li, Y., Wang, G., Liu, D., Cai, G., & He, C. (2021). A novel method to establish the rabbit model of knee osteoarthritis: intra-articular injection of SDF-1 induces OA. BMC Musculoskeletal Disorders, 22(1). https://doi.org/10.1186/s12891-021-04188-7

Wen, C., Lu, W. W., & Chiu, K. Y. (2014). Importance of subchondral bone in the pathogenesis and management of osteoarthritis from bench to bed. Journal of Orthopaedic Translation, 2(1), 16–25. https://doi.org/10.1016/j.jot.2013.11.004

Zhang, C., Li, Y., Cornelia, R., Swisher, S., & Kim, H. (2012). Regulation of VEGF expression by HIF-1α in the femoral head cartilage following ischemia osteonecrosis. Scientific Reports, 2(1). https://doi.org/10.1038/srep00650

Englund, M. (2010). The role of biomechanics in the initiation and progression of OA of the knee. Best Practice & Research Clinical Rheumatology, 24(1), 39–46. https://doi.org/10.1016/j.berh.2009.08.008

Sirenko, Y. M., & Torbas, O. O. (2020). State Institution “National Scientific Center “M.D. Strazhesko Institute of Cardiology” of the National Academy of Medical Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine. HYPERTENSION, 13(1), 27–36. https://doi.org/10.22141/2224-1485.13.1.2020.197886

Kellgren, J. H., & Lawrence, J. S. (1957). Radiological Assessment of Osteo-Arthrosis. Annals of the Rheumatic Diseases, 16(4), 494–502. https://doi.org/10.1136/ard.16.4.494

Hellio Le Graverand, M.-P., Mazzuca, S., Duryea, J., & Brett, A. (2009). Radiographic-Based Grading Methods and Radiographic Measurement of Joint Space Width in Osteoarthritis. Radiologic Clinics of North America, 47(4), 567–579. https://doi.org/10.1016/j.rcl.2009.04.004

Hellio Le Graverand, M.-P., Mazzuca, S., Duryea, J., & Brett, A. (2009b). Radiographic Grading and Measurement of Joint Space Width in Osteoarthritis. Rheumatic Disease Clinics of North America, 35(3), 485–502. https://doi.org/10.1016/j.rdc.2009.08.005

Biliavska, V., Kovalenko, V., Bortkevych, O., Garmish, O., Boyko, Y., Omelchenko, L., Oshlyanska, O., Marushko, T., Bogmat, L., & Shevchenko, N. (2017). THU0510 Ukrainian registry of jia patients receiving biologics: implementation into clinical practice and recent data. У Annual European Congress of Rheumatology, 14–17 June, 2017. BMJ Publishing Group Ltd and European League Against Rheumatism. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2017-eular.4681

Kolb, W., Guhlmann, H., Windisch, C., & Kolb, K. (2012). High Tibial Open-Wedge Osteotomy – New Techniques and Early Results. У Osteoarthritis - Diagnosis, Treatment and Surgery. InTech. https://doi.org/10.5772/29838

Porter, D. G. (1992). Ethical scores for animal experiments. Nature, 356(6365), 101–102. https://doi.org/10.1038/356101a0

Reznikov O.G., Solovyov A.I., Dobrolya N.V., Stefanov O.V., Bioethical examination of preclinical and other scientific research performed on animals (guidelines) [Article] // Journal of Pharmacology and Pharmacy. - 2007 p.. - 7. - pp. С. 47-61.

handa, m. (2013). Moral Standing of Animals in Scientific Experiments. SSRN Electronic Journal. https://doi.org/10.2139/ssrn.2361094

European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes: Strasbourg, 18 March1986. (1986). H.M.S.O.

Law of Ukraine "On the Protection of Animals from Cruel Treatment" // Bulletin of the Verkhovna Rada of Ukraine (VVR), No. 27 - 2006. - с. 230. - Document 3447-IV, edition of 08.08.2021, basis - 1684-IX.

Jim Gourdon Anna Jimenez, Comparative Medicine & Animal Resources Centre STANDARD OPERATING PROCEDURE #114 // McGill University Animal Care Committee. - Montréal (Québec), Canada:, 13 January 2021. - pp. 1-5.

Sibbald, R. (2018). Principles of rabbit anaesthesia for veterinary nurses. The Veterinary Nurse, 9(4), 202–206. https://doi.org/10.12968/vetn.2018.9.4.202

Torelli, S. R., Rahal, S. C., Volpi, R. S., Yamashita, S., Mamprim, M. J., & Crocci, A. J. (2004). Radiography, computed tomography and magnetic resonance imaging at 0.5 Tesla of mechanically inducedosteoarthritis in rabbit knees. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 37(4), 493–501. https://doi.org/10.1590/s0100-879x2004000400006

##submission.downloads##

Опубліковано

2023-12-20

Номер

Розділ

Ветеринарна медицина, якість і безпека продукції тваринництва